原代神经元细胞培养方法

2010-02-22 10:03 · Hedy

1.孕18天(E18d)SD大鼠。 2.培养板处理,每孔加0.01%多聚赖氨酸(PDL)盖没底部,过夜移去。 3.无菌水洗2次后,加DMEM+10%BS培养液平衡。 4.SD大鼠戊巴比妥麻醉,先用碘酒消毒大鼠腹部,再用75%乙醇消毒,切开子宫取胎鼠,移入超净台中,去除胎盘和

1.孕18天(E18d)SD大鼠。

2.培养板处理,每孔加0.01%多聚赖氨酸(PDL)盖没底部,过夜移去。

3.无菌水洗2次后,加DMEM+10%BS培养液平衡。

4.SD大鼠戊巴比妥麻醉,先用碘酒消毒大鼠腹部,再用75%乙醇消毒,切开子宫取胎鼠,移入超净台中,去除胎盘和脐带,将胎鼠放入另一无菌平皿中。

5.直接取脑。直头镊子将头部膜去除,如果不易去除,用尖头镊子刺一下;用弯头镊子将脑取出。

6.剥脑(取纹状体组织,去除脑膜血管),解剖显微镜下除去小脑,将大脑左右半球沿中缝分开,镊子去除中脑部分,然后将脑膜去除(去除脑膜主要是除去上皮细胞)。将去除脑膜后的半脑尽量分开,确认嗅球的位置,轻轻将皮层展开。嗅球后面颜色深的部分即为纹状体,海马为半透明月牙状。将组织放入4度的D-Hanks溶液中。

7.移去D-Hanks溶液,用虹膜剪将组织剪成1×1×1mm3的小块。

8.取0.125%胰酶(溶解在D-Hanks)5mL,加入20μL 25mg/mL Dnase,放入10mL离心管中,将剪碎的组织放入胰酶,37度消化15min,消化过程中轻摇2~3次。

9.将消化后的组织移入另一离心管,用DMEM+10%BS 终止反应。DMEM+10%BS加至6mL。

10.用火焰刨光的玻璃滴管轻轻吹打数次,静止2-3min,吸出上层细胞悬液至50mL离心管中,剩下的另加入DMEM+10%BS至6mL,用滴管轻吹数次,移入至50mL离心管中。

11.细胞计数。用DMEM+10%BS培养液调整细胞密度,接种在35mm皿中。(计数时,稀释5倍计数)。细胞数目7~8×105个 /mL,6孔板加入1mL。

12.5小时后换成全部Neurobasal+B27 2%,以后每隔2~3天进行1/3-1/2量换液。

神经元细胞沉降速度快,计数和种板前要混匀,种板时边摇烧杯,边加,使细胞悬浮。

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